用*的预装于电击杯的方式提供感受态细胞可 以zui大程度地简化电击过程的繁琐步骤。EasyShock 10B 感受态细胞由0.1cm 电击杯和20 µl of EP-Max 10B 电击组成。优点包括：
- 操作过程简化：只有一个加样步骤，无需其他小管
- 转化效率：>1 x 108 CFU/反应（ 足够量DNA ）, 0.5-1.5 x 1010 CFU/µg pUC19 DNA
- 包装完善紧凑：节约冷冻空间
另外，EasyShock 10B 具备所有EP-Max 10B 电击的优点
- 通过lacZΔM15 基因的alpha互补进行蓝白斑筛选
- 限制性系统突变用于克隆甲基化DNA
- 可以用于大片断插入质粒构建（zui大到37Kb）
EasyShock 10B 中使用的EP-Max 10B 电击。
使用EasyShock 10B 与普通操作步骤的比较
| EasyShock 操作步骤 | 普通操作步骤 |
| 1. 在冰上解冻 | 1. 在冰上预冷电击杯和小管 |
| 2. 将DNA 加入细胞中混合 | 2. 在冰上解冻 |
| 3. 电击 | 3. 将细胞转移到预冷的小管 |
| 4. 加入SOC 培养基并铺板 | 4. 将DNA 加入细胞中混合 |
| | 5. 转移悬浮液至电击杯 |
| | 6. 电击 |
| | 7. 加入SOC 培养基并铺板 |
Bio-Rad 提供以下5 种E.coli，包括化学和电、用于ssDNA 合成的F" 细胞和T1 噬菌体抗性细胞：
- EP-Max10B
- EP-Max10B F"
- EP-Max10B 抗T1
- C-Max 5alpha
- C-Max5alpha F"
【技术指标】
| 受体细胞选择指南
| | EP-Max10B | EP-Max10B F" | EP-Max10B
抗T1 | C-Max5alpha | C-Max5alpha F" | 转化效率
cfu＊/µg pUC19 DNA | >1 x 1010 | >1 x 1010 | >1 x 1010 | >1 x 109 | >1 x 109 | 用于克隆甲基化DNA 的
mrr, hsdRMS, mcrBC | 有 | 有 | 有 | 无 | 无 | | cDNA 克隆 | 有 | 有 | 有 | 有 | 有 | | 用于ssDNA 合成的F" 基因 | 无 | 有 | 无 | 无 | 有 | | 用于蓝/白筛选的lacZ∆M15 | 有 | 有 | 有 | 有 | 有 | | 用于调控表达的lacIq | 无 | 有 | 无 | 无 | 有 | | 噬菌体展示 | 无 | 无 | 无 | 无 | 有 | | 用于减少重组的recA | 有 | 有 | 有 | 有 | 有 | | 用于高质量质粒制备的endA | 有 | 有 | 有 | 有 | 有 | | 抗噬菌体感染的tonA | 无 | 无 | 有 | 无 | 无 |
＊ 菌落形成单位
Bio-Rad 基因型
| 细胞类型 | 转化方法 | 表型 | | EP-Max10B | 电穿孔 | F – mcrA ∆（mrr-hsdRMS-mcrBC） φ80dlacZ∆M15 ∆lacX74 deoR recA1 endA1 araD139 ∆（ara, leu）7697 galU galKrpsL nupG λ– | EP-Max10B
抗T1 | 电穿孔 | F – mcrA ∆（mrr-hsdRMS-mcrBC） φ80dlacZ∆M15 ∆lacX74 deoR recA1 endA1 araD139 ∆（ara, leu）7697 galU galKrpsL nupG λ– tonA | | EP-Max10B F" | 电穿孔 | mcrA ∆（mrr-hsdRMS-mcrBC） φ80dlacZ∆M15 ∆lacX74 deoR recA1 endA1 araD139 ∆（ara, leu）7697 galU galK rpsL nupG λ–/F"[lacIqZ∆M15 Tn10 （Tetr）] | | C-Max5alpha | 热击 | F – φ80dlacZ∆M15 ∆（lacZYA-argF）U169 recA1 endA1 hsdR17（rk–, mk+） phoA supE44 λ– thi-1 gyrA96 relA1 | | C-Max5alpha F" | 热击 | φ80dlacZ∆M15 ∆（lacZYA-argF）U169 recA1 endA1 hsdR17（rk–, mk+） phoA supE44 λ– thi-1 gyrA96 relA1/F"[lacIq Tn10 （Tetr）] | |
